The potential role of epigenetic factors in the development of functional hypothalamic amenorrhea: A review

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Functional hypothalamic amenorrhea (FHA) is a condition that occurs as a result of a malfunction of the hypothalamic-pituitary-ovarian axis in women of reproductive age due to effects of environmental factors, many of which are widely known. However, the factors that determine the individual predisposition to this condition, as well as the duration and severity of its course, remain unexplored. Epigenetic modifications that alter gene activity without altering DNA structure are among the most promising markers of many diseases, including those involving the hypothalamus-pituitary system. The pathogenetic role of one of the key epigenetic regulators in the genesis of these diseases – non-coding RNAs – is actively being studied. Also, the potential of using non-coding RNAs as therapeutic agents in some conditions is being investigated. The purpose of the review was to systematize the literature data on the potential role of microRNAs as one of the most actively studied epigenetic regulators in the pathogenesis of FHA. The main types of epigenetic modifications and current data on their role in the development of diseases involving the hypothalamus-pituitary system, as well as conditions associated with FHA, are described. The study of epigenetic regulators whose activity is altered by external factors in FHA development is highly promising. Moreover, further studies are needed to evaluate the potential of epigenetic regulators as therapeutic agents in patients with FHA to improve treatment effectiveness and minimize the adverse consequences of the disease on reproductive and somatic health.

Full Text

Введение

Функциональная гипоталамическая аменорея (ФГА) – потенциально обратимое нарушение работы гипоталамо-гипофизарно-яичниковой оси (ГГЯО) у пациенток репродуктивного возраста, характеризующееся нарушением пульсирующего режима секреции гонадотропин-рилизинг-гормона (ГнРГ) и, как следствие, гонадотропных и стероидных гормонов [1]. Клинически ФГА проявляется олиго-/аменореей вследствие стойкой ановуляции, и заинтересованные в беременности пациентки сталкиваются с трудностями ее достижения [1]. Характерная для ФГА длительная гипоэстрогения в репродуктивном возрасте имеет много негативных последствий для здоровья женщины – от изменения тургора кожи до снижения минеральной плотности костной ткани [2] и повышения риска сердечно-сосудистых заболеваний на фоне эндотелиальной дисфункции и дислипидемии [3]. Пациентки с ФГА предъявляют жалобы, характерные для сексуальной дисфункции, а также на нарушение когнитивных способностей [3]. Кроме того, среди таких пациенток обнаружена высокая распространенность дисфункциональных установок и психических расстройств (наиболее часто встречаются депрессия и расстройства пищевого поведения), при этом предполагается их взаимное потенцирование с ФГА [4].

Основными провоцирующими факторами ФГА считают энергетический дисбаланс алиментарного генеза или возникший в результате избыточных физических нагрузок, а также воздействие чрезмерных по силе и/или длительности стрессоров [1]. Показано, что значительный вклад в регуляцию ГГЯО при краткосрочных и долгосрочных изменениях энергетического баланса вносит система, состоящая из активинов А, В и фоллистатинов [5]. Однако помимо подробно изучаемых причин, связанных с образом жизни и приводящих к комплексу гормональных, нейроэндокринных и метаболических изменений (в том числе к изменению продукции орексигенных и анорексигенных молекул), у пациенток с ФГА предполагается наличие генетических и эпигенетических факторов повышенной восприимчивости ГГЯО к неблагоприятному воздействию внешних факторов [6].

Эпигенетические модификации: дефиниция и виды

В середине прошлого столетия начался постепенный переход от теории абсолютного контроля функционирования организма генетическим кодом индивида к оценке влияния дополнительных регуляторов, определяющих экспрессию генов [7]. В настоящий момент геном, рассматривающийся как основа поддержания стабильности организма, неразрывно связан с эпигенетическими факторами, которые, согласно определению R. Holliday (1990 г.), представляют собой «механизмы временного и пространственного контроля генной активности в сложных организмах» [8]. Эпигеном способен изменяться под воздействием внешних факторов, к примеру ксенобиотиков, стрессоров, изменения питания, которые в сумме называют экспосомом [9]. Важно, что приобретенные эпигенетические изменения могут не только сохраняться на длительный период, но также оказывать влияние на состояние здоровья последующих поколений [10].

Основные эпигенетические модификации:

  1. метилирование ДНК;
  2. изменения состояния хроматина, в том числе связанные с модификацией гистонов;
  3. трехмерная организация генома;
  4. РНК-опосредованная регуляция генов [9].

Также активно изучаются такие механизмы, как инактивация Х-хромосомы, генный импринтинг, мозаичный эффект положения гена, парамутации, моноаллельная экспрессия и др. [7].

Что касается гистоновых белков, то их основная роль заключается в поддержании структурной стабильности хромосом [9]. Хотя гистоны сами по себе в целом достаточно консервативны, в некоторых случаях они способны изменяться под влиянием факторов внешней среды [9]. Основные модификации гистонов, регулирующие скорость транскрипции генов: ацетилирование, фосфорилирование, метилирование, убиквитинирование, сумоилирование и глутатионилирование [11]. До настоящего времени изучение посттрансляционных модификаций было в большей степени направлено на процессы ацетилирования (стимулирующего транскрипцию) и метилирования (способного как стимулировать, так и ингибировать транскрипцию) [11].

Метилирование ДНК представляет собой опосредованный ДНК-метилтрансферазами процесс модификации молекулы ДНК без изменения последовательности нуклеотидов в ней [9]. Известна значимость метилирования в регуляции многих клеточных механизмов, в частности процессов репликации, транскрипции, репарации ДНК, рекомбинации и транспозиции генов [7]. Метилирование способствует определению пути клеточной дифференцировки и препятствует экспрессии экзогенных (вирусных и других) последовательностей ДНК [7]. При этом метилтрансфераза DNMT1 поддерживает стабильность существующих паттернов метилирования ДНК, а DNMT3A и DNMT3B способствуют установлению новых паттернов под воздействием экспосома [12]. Известно, что метилирование ДНК может оказывать непосредственное воздействие на сборку факторов транскрипции, а также участвовать в модуляции структуры хроматина [11].

Метилирование ДНК и модификации гистонов влияют на трехмерную организацию генома [7]. Если два локуса хроматинового волокна находятся в непосредственной близости, существует более высокая вероятность их физического взаимодействия, при этом для перестройки паттернов экспрессии генов требуются высокодинамичные изменения конформации генов [13]. Различные районы генома разделены на отдельные самовзаимодействующие домены, называемые топологически ассоциированными, играющими важную роль в локальной регуляции транскрипции генов [13]. Изменение границ этих доменов приводит к обширным генетическим перестройкам, однако некоторые участки топологически ассоциированных доменов, вероятно, формируются специализированными или тканеспецифичными факторами транскрипции [13].

Некодирующие РНК и микроРНК, в частности, подавляют экспрессию целевого гена путем ингибирования трансляции и увеличения деградации матричных РНК и рассматриваются как одни из ключевых эпигенетических регуляторов, влияющих на многие биологические процессы, в том числе на развитие и пролиферацию клеток, апоптоз, синаптическую пластичность и энергетический метаболизм [14, 15]. Предполагается, что микроРНК модулируют активность приблизительно 30% генов, кодирующих белки [15].

Роль эпигенетических факторов в генезе ФГА

Активно изучается вклад эпигенетических механизмов (продукции хроматина, метилирования ДНК, экспрессии некодирующих РНК), влияющих на активность генов, в развитие различных заболеваний или состояний, затрагивающих активность гипоталамо-гипофизарной системы [14]. ГГЯО – пример динамически изменяющейся системы, функция которой определяется изменениями в онтогенетических и временных паттернах экспрессии генов [16]. В настоящее время исследователями изучается роль различных дистальных регуляторных элементов в регуляции активности ГГЯО [16].

Так, показано, что модификации хроматина участвуют в динамической регуляции и спецификации экспрессии ГнРГ в дифференцированных нейронах гипоталамуса [17], поддержание его пермиссивного состояния играет решающую роль в осуществлении правильного функционирования системы гипоталамус-гипофиз [11].

По результатам исследования A. Borçoi и соавт. (2020 г.), нарушение регуляции гипоталамо-гипофизарной оси, опосредованное изменением метилирования гена NR3C1, ассоциировано с увеличением риска развития депрессии [18], что также подтверждено данными систематического обзора M. Billah и соавт. (2025 г.) [19]. Кроме того, изменения уровня метилирования этого гена и гена FKBP5 ассоциированы с развитием посттравматического стрессового расстройства [20].

Кроме того, по данным метаанализов S. Voisin и соавт. (2024 г.) и J. Chambers и соавт. (2025 г.), модификация физической активности приводит к изменению метилирования генов, участвующих в регуляции мышечного метаболизма и митохондриального функционирования, обмена липидов и углеводов [21, 22].

Накапливается все больше данных о роли самих микроРНК во всех этапах развития нервной системы, а их дисрегуляции – в возникновении аномалий развития нервной системы, психиатрических и нейродегенеративных заболеваний [23], наиболее изученные из которых – болезни Паркинсона, Альцгеймера, Хантингтона, боковой амиотрофический и рассеянный склероз, для которых применение микроРНК рассматривается как новый перспективный терапевтический метод [24].

Также микроРНК рассматриваются как потенциальный биомаркер эндокринных нарушений [25], показана взаимосвязь микроРНК с регуляторными молекулами [26]. При этом в ряде исследований изучена взаимосвязь микроРНК и состояний, ассоциированных с ФГА (табл. 1).

 

Таблица 1. Взаимосвязь микроРНК и ассоциированных с ФГА процессов

Table 1. Relationship of microRNAs and functional hypothalamic amenorrhea associated processes

Семейство микроРНК

Связанные эффекты

Объект (исследуемая ткань)

Источник информации

Миграция и развитие нейронов ГнРГ

Экспрессия GNRH1

Синтез ГнРГ

Экспрессия LHCGR

Экспрессия LHB

Синтез ЛГ

Экспрессия FSHB

Синтез ФСГ

Синтез эстрадиола

Экспрессия KISS1

Уровень кисспептина

Время наступления полового созревания

Метаболический гомеостаз

Нейрогенез / синаптическая пластичность / пороговый уровень восприимчивости к стрессу

miR-1

            

 

Мыши (мышечные клетки)

F. de Toledo и соавт. (2016 г.) [27]

miR-7

    

 

   

 

Мыши (гипоталамус, гипофиз, яичники), крысы (гипоталамус)

K. Ahmed и соавт. (2017 г.) [28], C. Wang и соавт. (2019 г.) [29], L. Li и соавт. (2022 г.) [30]

miR-9

            

Человек (кровь), крысы (клеточная культура нейронов гиппокампа), мыши (обонятельный эпителий эмбрионов мышей)

X. Xian и соавт. (2022 г.) [31], G. Garaffo и соавт. (2015 г.) [32]

miR-21

      

      

Крысы (гипофиз, кровь)

D. Han и соавт. (2017 г.) [33]

miR-26

            

Человек (клетки печени), мыши (клетки печение), крысы (гипокамп)

X. Fu и соавт. (2015 г.) [34], H. Хu и соавт. (2020 г.) [35], Y. Li и соавт. (2021 г.) [36]

miR-29

 

   

 

   

  

Мыши (нейроны гипоталамуса, гипофиз, кровь)

X. Li и соавт. (2019 г.) [37], Y. Guo и соавт. (2021 г.) [38]

miR-103

            

 

Человек (клетки печени), мыши (клетки печени)

M. Trajkovski и соавт. (2011 г.) [39]

miR-105

          

   

Свиньи (гранулезные клетки яичников)

Z. Fabová и соавт. (2024 г.) [40]

miR-107

            

 

Человек (клетки печени), мыши (клетки печени)

M. Trajkovski и соавт. (2011 г.) [39]

miR-125

            

 

Мыши (клетки крови и печени)

Liu R. и соавт. (2020 г.) [41]

miR-137

     

   

   

Человек (эмбриональные клетки почек), крысы (гипоталамус, кровь)

M. Avendaño и соавт. (2024 г.) [42]

miR-144

             

Мыши (кровь)

Y. van der Zee и соавт. (2022 г.) [43]

miR-146

             

Крысы (гиппокамп)

C. Fan и соавт. (2022 г.) [44]

miR-186

      

      

Крысы (аденогипофиз)

D. Han и соавт. (2018 г.) [45]

miR-199

         

 

  

Мыши (гипоталамус)

X. Li и соавт. (2020 г.) [46]

miR-200

  

 

        

Мыши (гипофиз, кровь, обонятельный эпителий эмбрионов)

H. Hasuwa и соавт. (2013 г.) [47], G. Garaffo и соавт. (2015 г.) [32]

miR-325

     

   

   

Человек (эмбриональные клетки почек), крысы (гипоталамус, кровь)

M. Avendaño и соавт. (2024 г.) [42]

miR-361

      

      

Свиньи (гипофиз, кровь)

R. Ye и соавт. (2017 г.) [48]

miR-375

  

           

Человек (клеточная линия нейронов ГнРГ)

H. Li и соавт. (2021 г.) [49]

miR-429

   

 

        

Мыши (гипофиз, кровь)

H. Hasuwa и соавт. (2013 г.) [47]

miR-433

      

      

Крысы (гипофиз, кровь)

D. Han и соавт. (2017 г.) [33]

miR-488

      

      

Крупный рогатый скот (аденогипофиз)

H. Wang и соавт. (2021 г.) [50]

miR-505

           

  

Мыши (гипоталамус)

Y. Zhou и соавт. (2019 г.) [51]

miR-513

   

          

Яичники женщин (гранулезные клетки)

B. Troppmann и соавт. (2014 г.) [52]

miR-592

   

          

Женщины (кровь, культура гранулезных клеток яичников)

J. Song и соавт. (2015 г.) [53]

miR-664

  

  

 

      

Крысы (гипоталамус)

M. Ju и соавт. (2019 г.) [54]

oaR-let-7

          

   

Овцы (яичники)

T. Dai и соавт. (2025 г.) [55]

Примечание. ЛГ – лютеинизирующий гормон, ФСГ – фолликулостимулирующий гормон; ↑ – прямая связь, ↓ – обратная связь.

 

Заключение

Исследование роли эпигенетических механизмов, запускаемых неблагоприятными внешними воздействиями, в развитии нарушений со стороны гипоталамо-гипофизарной системы, и ФГА в частности, крайне перспективно с диагностической точки зрения. Кроме того, более точное понимание этих механизмов может способствовать разработке принципиально новых подходов к лечению пациенток с ФГА для повышения клинической эффективности их лечения и сохранения соматического и репродуктивного здоровья.

Раскрытие конфликта интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Disclosure of interest. The authors declare that they have no competing interests.

Вклад авторов. Авторы декларируют соответствие своего авторства международным критериям ICMJE. Д.М. Ермакова – концептуализация, исследование, формальный анализ, написание – первоначальный вариант, написание – рецензирование и редактирование; Ф.С. Рахмонова – исследование, формальный анализ, написание – первоначальный вариант; Н.В. Долгушина – концептуализация, методология, написание – рецензирование и редактирование.

Authors' contribution. The authors declare the compliance of their authorship according to the international ICMJE criteria. D.M. Ermakova – conceptualization, investigation, formal analysis, writing – original draft, writing – review & editing; F.S. Rakhmonova – investigation, formal analysis, writing – original draft; N.V. Dolgushina – conceptualization, methodology, writing – review & editing.

Источник финансирования. Авторы декларируют отсутствие внешнего финансирования для проведения исследования и публикации статьи.

Funding source. The authors declare that there is no external funding for the exploration and analysis work.

Раскрытие информации об использовании ИИ. При написании статьи ИИ не использовался.

Disclosing the use of AI. No AI was used when writing the article.

×

About the authors

Daria M. Ermakova

Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology

Email: f_rakhmonova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0002-8558-4687

Cand. Sci. (Med.)

Russian Federation, Moscow

Farzona S. Rakhmonova

Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology

Author for correspondence.
Email: f_rakhmonova@oparina4.ru
ORCID iD: 0009-0000-6615-9426

Postgraduate Student

Russian Federation, Moscow

Nataliya V. Dolgushina

Kulakov National Medical Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology

Email: f_rakhmonova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0003-1116-138X

D. Sci. (Med.), Prof.

Russian Federation, Moscow

References

  1. Roberts RE, Farahani L, Webber L, Jayasena C. Current understanding of hypothalamic amenorrhoea. Ther Adv Endocrinol Metab. 2020;11:2042018820945854. doi: 10.1177/2042018820945854
  2. Behary P, Comninos AN. Bone Perspectives in Functional Hypothalamic Amenorrhoea: An Update and Future Avenues. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13:923791. doi: 10.3389/fendo.2022.923791
  3. Meczekalski B, Katulski K, Czyzyk A, et al. Functional hypothalamic amenorrhea and its influence on women’s health. J Endocrinol Invest. 2014;37(11):1049-56. doi: 10.1007/s40618-014-0169-3
  4. Bonazza F, Politi G, Leone D, et al. Psychological factors in functional hypothalamic amenorrhea: A systematic review and meta-analysis. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14:981491. doi: 10.3389/fendo.2023.981491
  5. Perakakis N, Upadhyay J, Ghaly W, et al. Regulation of the activins-follistatins-inhibins axis by energy status: Impact on reproductive function. Metabolism. 2018;85:240-9. doi: 10.1016/j.metabol.2018.05.003
  6. Young J. Does Genetic Susceptibility of the Gonadotropic Axis Explain the Variable Impact of Stressors Causing Functional Hypothalamic Amenorrhea? J Clin Endocrinol Metab. 2021;106(3):e1473-5. doi: 10.1210/clinem/dgaa677
  7. Щуко А.Г., Веселов А.А., Юрьева Т.Н., и др. Эпигенетика и способы ее реализации. Сибирский научный медицинский журнал. 2017;37(4):26-36 [Shchuko AG, Veselov AA, Yurieva TN, et al. Epigenetics and methods of its realization. Sibirskii Nauchnyi Meditsinskii Zhurnal. 2017;37(4):26-36 (in Russian)].
  8. Holliday R. Mechanisms for the control of gene activity during development. Biol Rev Camb Philos Soc. 1990;65(4):431-71. doi: 10.1111/j.1469-185x.1990.tb01233.x
  9. Klibaner-Schiff E, Simonin EM, Akdis CA, et al. Environmental exposures influence multigenerational epigenetic transmission. Clin Epigenetics. 2024;16(1):145. doi: 10.1186/s13148-024-01762-3
  10. Neumann A, Sammallahti S, Cosin-Tomas M, et al. Epigenetic timing effects on child developmental outcomes: a longitudinal meta-regression of findings from the Pregnancy And Childhood Epigenetics Consortium. Genome Med. 2025;17(1):39. doi: 10.1186/s13073-025-01451-7
  11. Kurian JR, Terasawa E. Epigenetic control of gonadotropin releasing hormone neurons. Front Endocrinol (Lausanne). 2013;4:61. doi: 10.3389/fendo.2013.00061
  12. Gao L, Emperle M, Guo Y, et al. Comprehensive structure-function characterization of DNMT3B and DNMT3A reveals distinctive de novo DNA methylation mechanisms. Nat Commun. 2020;11(1):3355. doi: 10.1038/s41467-020-17109-4
  13. Papadogkonas G, Papamatheakis DA, Spilianakis C. 3D Genome Organization as an Epigenetic Determinant of Transcription Regulation in T Cells. Front Immunol. 2022;13:921375. doi: 10.3389/fimmu.2022.921375
  14. Fontana L, Garzia E, Marfia G, et al. Epigenetics of functional hypothalamic amenorrhea. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13:953431. doi: 10.3389/fendo.2022.953431
  15. Derghal A, Djelloul M, Trouslard J, Mounien L. An Emerging Role of micro-RNA in the Effect of the Endocrine Disruptors. Front Neurosci. 2016;10:318. doi: 10.3389/fnins.2016.00318
  16. Refael T, Melamed P. Enhancing Gonadotrope Gene Expression Through Regulatory lncRNAs. Endocrinology. 2021;162(8):bqab116. doi: 10.1210/endocr/bqab116
  17. Iyer AK, Brayman MJ, Mellon PL. Dynamic chromatin modifications control GnRH gene expression during neuronal differentiation and protein kinase C signal transduction. Mol Endocrinol. 2011;25(3):460-73. doi: 10.1210/me.2010-0403
  18. Borçoi AR, Mendes SO, Gasparini Dos Santos J, et al. Risk factors for depression in adults: NR3C1 DNA methylation and lifestyle association. J Psychiatr Res. 2020;121:24-30. doi: 10.1016/j.jpsychires.2019.10.011
  19. Billah MM, Guo C, Mizuno K, et al. DNA methylation studies in mouse models of depression: a systematic review. Epigenomics. 2025;17(12):837-49. doi: 10.1080/17501911.2025.2525750
  20. Miller O, Shakespeare-Finch J, Bruenig D, Mehta D. DNA methylation of NR3C1 and FKBP5 is associated with posttraumatic stress disorder, posttraumatic growth, and resilience. Psychol Trauma. 2020;12(7):750-5. doi: 10.1037/tra0000574
  21. Voisin S, Seale K, Jacques M, et al. Exercise is associated with younger methylome and transcriptome profiles in human skeletal muscle. Aging Cell. 2024;23(1):e13859. doi: 10.1111/acel.13859
  22. Chambers J, Roscoe CMP, Chidley C, et al. Molecular Effects of Physical Activity and Body Composition: A Systematic Review and Meta-Analysis. Int J Environ Res Public Health. 2025;22(4):637. doi: 10.3390/ijerph22040637
  23. Ding R, Su D, Zhao Q, et al. The role of microRNAs in depression. Front Pharmacol. 2023;14:1129186. doi: 10.3389/fphar.2023.1129186
  24. de Souza PC, Warren Bezerra TP, de Oliveira ILR, et al. MicroRNAs in neuroplasticity: a comprehensive review of mechanisms and therapeutic strategies for neurodegenerative diseases. Neuroscience. 2025;585:97-106. doi: 10.1016/j.neuroscience.2025.08.034
  25. Eiras MC, Pinheiro DP, Romcy KAM, et al. Polycystic Ovary Syndrome: the Epigenetics Behind the Disease. Reprod Sci. 2022;29(3):680-94. doi: 10.1007/s43032-021-00516-3
  26. Li X, Qiu J, Liu H, et al. MicroRNA-33a negatively regulates myoblast proliferation by targeting IGF1, follistatin and cyclin D1. Biosci Rep. 2020;40(6):BSR20191327. doi: 10.1042/BSR20191327
  27. de Toledo F, de Mendonça M, Martins AR, et al. MyomiRs as Markers of Insulin Resistance and Decreased Myogenesis in Skeletal Muscle of Diet-Induced Obese Mice. Front Endocrinol (Lausanne). 2016;7:76. doi: 10.3389/fendo.2016.00076
  28. Ahmed K, LaPierre MP, Gasser E, et al. Loss of microRNA-7a2 induces hypogonadotropic hypogonadism and infertility. J Clin Invest. 2017;127(3):1061-74. doi: 10.1172/JCI90031
  29. Wang CJ, Guo HX, Han DX, et al. Pituitary tissue-specific miR-7a-5p regulates FSH expression in rat anterior adenohypophyseal cells. PeerJ. 2019;7:e6458. doi: 10.7717/peerj.6458
  30. Li L, Zhang J, Lu C, et al. MicroRNA-7a2 Contributes to Estrogen Synthesis and Is Modulated by FSH via the JNK Signaling Pathway in Ovarian Granulosa Cells. Int J Mol Sci. 2022;23(15):8565. doi: 10.3390/ijms23158565
  31. Xian X, Cai LL, Li Y, et al. Neuron secrete exosomes containing miR-9-5p to promote polarization of M1 microglia in depression. J Nanobiotechnology. 2022;20(1):122. doi: 10.1186/s12951-022-01332-w
  32. Garaffo G, Conte D, Provero P, et al. The Dlx5 and Foxg1 transcription factors, linked via miRNA-9 and -200, are required for the development of the olfactory and GnRH system. Mol Cell Neurosci. 2015;68:103-19. doi: 10.1016/j.mcn.2015.04.007
  33. Han DX, Sun XL, Xu MQ, et al. Roles of differential expression of microRNA-21-3p and microRNA-433 in FSH regulation in rat anterior pituitary cells. Oncotarget. 2017;8(22):36553-65. doi: 10.18632/oncotarget.16615
  34. Fu X, Dong B, Tian Y, et al. MicroRNA-26a regulates insulin sensitivity and metabolism of glucose and lipids. J Clin Invest. 2015;125(6):2497-509. doi: 10.1172/JCI75438
  35. Xu H, Du X, Xu J, et al. Pancreatic β cell microRNA-26a alleviates type 2 diabetes by improving peripheral insulin sensitivity and preserving β cell function. PLoS Biol. 2020;18(2):e3000603. doi: 10.1371/journal.pbio.3000603
  36. Li Y, Fan C, Wang L, et al. MicroRNA-26a-3p rescues depression-like behaviors in male rats via preventing hippocampal neuronal anomalies. J Clin Invest. 2021;131(16):853. doi: 10.1172/JCI148853
  37. Li X, Xiao J, Fan Y, et al. miR-29 family regulates the puberty onset mediated by a novel Gnrh1 transcription factor TBX21. J Endocrinol. 2019;242(3):185-97. doi: 10.1530/JOE-19-0082
  38. Guo Y, Wu Y, Shi J, et al. miR-29a/b1 Regulates the Luteinizing Hormone Secretion and Affects Mouse Ovulation. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12:636220. doi: 10.3389/fendo.2021.636220
  39. Trajkovski M, Hausser J, Soutschek J, et al. MicroRNAs 103 and 107 regulate insulin sensitivity. Nature. 2011;474(7353):649-53. doi: 10.1038/nature10112
  40. Fabová Z, Loncová B, Harrath AH, Sirotkin AV. Does the miR-105-1-Kisspeptin Axis Promote Ovarian Cell Functions? Reprod Sci. 2024;31(8):2293-308. doi: 10.1007/s43032-024-01554-3
  41. Liu R, Wang M, Li E, et al. Dysregulation of microRNA-125a contributes to obesity-associated insulin resistance and dysregulates lipid metabolism in mice. Biochim Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids. 2020;1865(5):158640. doi: 10.1016/j.bbalip.2020.158640
  42. Avendaño MS, Perdices-Lopez C, Guerrero-Ruiz Y, et al. The evolutionary conserved miR-137/325 tandem mediates obesity-induced hypogonadism and metabolic comorbidities by repressing hypothalamic kisspeptin. Metabolism. 2024;157:155932. doi: 10.1016/j.metabol.2024.155932
  43. van der Zee YY, Eijssen LMT, Mews P, et al. Blood miR-144-3p: a novel diagnostic and therapeutic tool for depression. Mol Psychiatry. 2022;27(11):4536-49. doi: 10.1038/s41380-022-01712-6
  44. Fan C, Li Y, Lan T, et al. Microglia secrete miR-146a-5p-containing exosomes to regulate neurogenesis in depression. Mol Ther. 2022;30(3):1300-14. doi: 10.1016/j.ymthe.2021.11.006
  45. Han DX, Xiao Y, Wang CJ, et al. Regulation of FSH expression by differentially expressed miR-186-5p in rat anterior adenohypophyseal cells. PLoS One. 2018;13(3):e0194300. doi: 10.1371/journal.pone.0194300
  46. Li X, Xiao J, Li K, Zhou Y. MiR-199-3p modulates the onset of puberty in rodents probably by regulating the expression of Kiss1 via the p38 MAPK pathway. Mol Cell Endocrinol. 2020;518:110994. doi: 10.1016/j.mce.2020.110994
  47. Hasuwa H, Ueda J, Ikawa M, Okabe M. miR-200b and miR-429 function in mouse ovulation and are essential for female fertility. Science. 2013;341(6141):71-3. doi: 10.1126/science.1237999
  48. Ye RS, Li M, Li CY, et al. miR-361-3p regulates FSH by targeting FSHB in a porcine anterior pituitary cell model. Reproduction. 2017;153(3):341-9. doi: 10.1530/REP-16-0373
  49. Li H, Li X, Zhang D, et al. MiR-375 potentially enhances GnRH expression by targeting Sp1 in GT1-7 cells. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2021;57(4):438-47. doi: 10.1007/s11626-020-00447-4
  50. Wang HQ, Wang WH, Chen CZ, et al. Regulation of FSH Synthesis by Differentially Expressed miR-488 in Anterior Adenohypophyseal Cells. Animals (Basel). 2021;11(11):3262. doi: 10.3390/ani11113262
  51. Zhou Y, Tong L, Wang M, et al. miR-505-3p is a repressor of puberty onset in female mice. J Endocrinol. 2019;240(3):379-92. doi: 10.1530/JOE-18-0533
  52. Troppmann B, Kossack N, Nordhoff V, et al. MicroRNA miR-513a-3p acts as a co-regulator of luteinizing hormone/chorionic gonadotropin receptor gene expression in human granulosa cells. Mol Cell Endocrinol. 2014;390(1-2):65-72. doi: 10.1016/j.mce.2014.04.003
  53. Song J, Luo S, Li SW. miRNA-592 is downregulated and may target LHCGR in polycystic ovary syndrome patients. Reprod Biol. 2015;15(4):229-37. doi: 10.1016/j.repbio.2015.10.005
  54. Ju M, Yang L, Zhu J, et al. MiR-664-2 impacts pubertal development in a precocious-puberty rat model through targeting the NMDA receptor-1. Biol Reprod. 2019;100(6):1536-48. doi: 10.1093/biolre/ioz044
  55. Dai T, Wei S, Li X, et al. A novel mechanism of kisspeptin regulating ovarian granulosa cell function via down-regulating let-7b to activate ERK/PI3K-Akt pathway in Tan sheep. Domest Anim Endocrinol. 2025;92:106947. doi: 10.1016/j.domaniend.2025.106947

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2026 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-63961 от 18.12.2015.