Эффективность родентицидов на основе бромадиолона против обыкновенной полевки Microtus arvalis Pall. в лабораторных условиях

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Количество препаратов на основе антикоагулянта 2-го поколения бромадиолона в составе каталога средств защиты растений от мышевидных грызунов в России растет, но сведения об эффективности этого действующего вещества против обыкновенной полевки Microtus arvalis Pall. весьма ограничены. В лабораторном исследовании бромадиолона показана острая ЛД50 = 3.3 + 0.8 мг/кг, повышенную устойчивость, равную ЛД50 5.2 мг/кг, выявили у особей, проходивших отбор по признаку резистентности к антикоагулянтам 1-го поколения на фоне рациона с высоким содержанием витамина К (зеленый корм). Относительную устойчивость в лаборатории грызуны преодолевали при 3-суточном потреблении приманки (0.05 г бромадиолона/ кг). В полевых условиях эффективность обработок может снижаться и вести к отбору резистентных особей. Родентицидные приманки на основе бромадиолона подходят для контроля численности сообществ мышевидных грызунов при доминировании обыкновенной полевки и проведении обработок в начале роста численности популяции.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Н. В. Бабич

Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений; ООО “Инновационный центр защиты растений”

Автор, ответственный за переписку.
Email: natbabich@gmail.com
Россия, 196608 Санкт-Петербург–Пушкин, ш. Подбельского, 3; 196608 Санкт-Петербург–Пушкин, а/я 5

Список литературы

  1. Клименко О.Н., Бабич Н.В., Яковлев А.А. Родентициды для защиты от грызунов в поле // Защита и карантин раст. 2004. № 8. С. 23–24.
  2. Яковлев А.А., Бабич Н.В., Покровская С.Д., Долженко В.И. Биологическая эффективность антикоагулянтных родентицидов против обыкновенной и общественной полевок // Вестн. защиты раст. 2005. № 2. С. 55–57.
  3. Яковлев А.А., Бабич Н.В., Драгомиров К.А. Эффективность антикоагулянтных родентицидов // Защита и карантин раст. 2010. № 1. С. 23–25.
  4. Бабич Н.В., Яковлев А.А., Драгомиров К.А. Устойчивость обыкновенной полевки Microtus arvalis Pall. к антикоагулянтным родентицидам из группы 1,3-индан-дионов // Териофауна России и сопредельных территорий. Мат-лы Международ. совещ. 31 января-2 февраля 2007 г. М., С. 33.
  5. Бабич Н.В., Яковлев А.А. Развитие резистентности к антикоагулянтным родентицидам у полевых грызунов в России // Тез. докл. IV Всерос. съезда по защите раст. “Фитосанитарные технологии в обеспечении независимости и конкурентоспособности АПК России”. СПб., 2019. С. 311.
  6. Rost S., Fregin A., Ivaskevicius V., Conzelmann E., Hörtnagel K., Pelz H.-J., Lappegard K., Seifried E., Scharrer I., Tuddenham E.G.D. Mutations in VKORC1 cause warfarin resistance and multiple coagulation factor deficiency type 2 // Nature. 2004. V. 427(6974). P. 537–541.
  7. Зотова И.В., Никитин А.Г., Фаттахова Э.Н., Бровкин А.Н., Ходырев Д.С., Лаврикова Е.Ю., Исаева М.Ю., Косухина А.С., Носиков В.В., Затейщиков Д.А. Влияние полиморфизма генов CYP2C9 и VKORC1 на безопасность терапии варфарином // Клинич. практика. 2013. № 4(16). URL: https://cyberleninka.ru/ article/n/vliyanie-polimorfizma-genov-cyp2c9-i- vkorc1-na-bezopasnost-terapii-varfarinom
  8. Fujita S., Chiba I., Ishizuka M., Hishi H., Iwata H., Sakkibara A., Tanabe S., Kazusaka A., Masuda M., Masuda Y., Nakagawa H. P450 in wild animals as a biomarker of environmental impact // Biomarkers. 2001. V. 6(1). Р. 19– 25. https://doi.org/10.1080/135475001452751
  9. Horak K.E., Volker S.F., Campton C.M. Increased diphacinone and chlorophacinone metabolism in previously exposed wild caught voles, Microtus californicus // Crop Protect. 2015. V. 78. P. 35–39. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2015.08.011. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2018-4(98)-58-62
  10. Markussen M.D., Heiberg A.-C., Fredholm M., Kristensen M. Differential expression of cytochrome P450 genes between bromadiolone-resistant and anticoagulant-susceptible Norway rats: a possible role for pharmacokinetics in bromadiolone resistance // Pest Manag. Sci. 2008. V. 64. Р. 239–248. http://dx.doi.org/10.1002/ps.1506
  11. Khalil R.A., Barbier B., Fafournoux A., Mahamat A.B., Marquez A., Poissenot K., Keller M., Desvars-Larrive A., Fernandez-De-Simon J., Coeurdassier M., Benoit E., Lefebvre S., Pinot A., Lattard V. Seasonal diet-based resistance to anticoagulant rodenticides in the fossorial water vole (Arvicola amphibius) // Environ. Res. 2021. V. 200. 111422. https://doi.org/10.1016/j.envres.2021.111422
  12. Prescott C.V., Buckle A.P., Hussain I., Endepols S. A standardised BCR resistance test for all anticoagulant rodenticides // Inter. J. Pest Manag. 2007. № 53(4). P. 265–272.
  13. Marvo M. Efficacy of a number of toxic baits and batting against the voles, Microtus agrestis and Arvicola terrestris // Proceed. Eleventh Vertebrate Pest Conf. 1984. V. 27. https://digitalcommons.unl.edu/vpc11/27
  14. Bulletin OEPP/ EPPO 1982 laboratory tests for evaluation of the toxicity and acceptability of rodenticides and rodenticide preparations no 113 guideline for the efficacy evaluation of rodenticides. P. 1–10.
  15. Saucy F., Meylan A., Poitry R. Lessons from 18 years of use of anticoagulants against fossorial Arvicola terrestris in Switzerland / Eds. Pelz J., Cowan P., Feare C. // Adv. Vertebrate Pest Manag. II. Fürth: Filander Verlag, 2001.
  16. Poché R.M. Rodent tissue residue and secondary hazard studies with bromadiolone // Bull. OEPP/EPPO. 1988. V. 18.323–30. P. 71–90.
  17. Berny P.J., Buronfosse T., Buronfosse F., Lamarque F., Lorgue G. Field evidence of secondary poisoning of foxes (Vulpes vulpes) and buzzards (Buteo buteo) by bromadiolone, a 4-year survey // Chemosphere. 1997. V. 35(8). P. 1817–1829.
  18. Карякин И.В. Катастрофические последствия дератизации с использованием бромадиолона в Монголии в 2001–2003 гг. для российской популяции птиц // Пест-менеджмент. 2010. № 1. Институт Пест-Менеджмента, C. 20–26.
  19. Sage M., Coeurdassier M., Defaut R., Lucot E., Barbier B., Rieffel D., Berny P., Giraudoux P. How environment and vole behaviour may impact rodenticide bromadiolone persistence in wheat baits after field controls of Arvicola terrestris // Environ. Pollut. 2007. V. 148. P. 372–379.
  20. RRAC, RRAC guidelines on anticoagulant rodenticide resistance management. Rodenticide resistance action committee. Brussels, Belgium: CropLife International, 2016. 32 p. https://about.rrac.info/releases/technical-monographs.html
  21. Blažić T., Jokić G., Götz M., Esther A., Vukša M., Đedović S. Brodifacoum as a first choice rodenticide for controlling bromadiolone-resistant Mus musculus // J. Stored Prod. Res. 2018. V. 79(2). P. 29–33. https://doi.org/10.1016/j.jspr.2018.08.006
  22. Vein J., Grandemange A., Cosson J.F., Benoit E., Berny P.J. Are water vole resistant to anticoagulant rodenticides following field treatments? // Ecotoxicology. 2011. V. 20(6). P. 1432–1441. https://doi.org/10.1007/s10646-011-0700-7
  23. Khalil R.A., Barbier B., Rached A., Benoit E., Pinot A., Lattard V. Water vole management – Could anticoagulant rodenticides stereochemistry mitigate the ecotoxicity issues associated to their use? // Environ. Toxicol. Pharmacol. 2021. V. 81. P. 103536. https://doi.org/10.1016/j.etap.2020.103536
  24. Бабич Н.В., Яковлев А.А. Лабораторные методы исследования родентицидов для защиты от полевых грызунов // Вестн. защиты раст. 2018. № 4(98). C. 58–62. https://doi.org/10.31993/2308-6459-2018-4(98)-58-62
  25. Яковлев А. А. Методические рекомендации по контролю за резистентностью обыкновенной полевки (Microtus arvalis Pall) к антикоагулянтным родентицидам // Агрохимия. 2023. № 1. С. 66–72. https://doi.org/10.31857/S0002188123010118
  26. Jokić G., Vukša M., Đedović S., Kljajić P. Laboratory testing of wood mouse and common vole sensitivity to bromadiolone, sodium selenite, and cellulose // J. Pest Sci. 2014. V. 87(2). https://doi.org/10.1007/s10340-014-0554-x
  27. Giraudoux P., Tremollières C., Barbier B., Defaut R., Rieffel D., Bernard N., Lucot E., Berny P. Persistence of bromadiolone anticoagulant rodenticide in Arvicola terrestris populations after field control // Environ. Res. 2006. V. 102(3). P. 291–298. https://doi.org/10.1016/j.envres.2006.02.008.
  28. Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации, по состоянию на 31 марта 2023 г. https://mcx.gov.ru/ministry/depart- ments/departament-raste-nievodstva-mekhanizatsii- khimizatsii-i-zashchity-rasteniy/industry-information/ info-gosudarstvennaya-usluga-po-gosudar-stvennoy- registratsii-pestitsidov-i-agrokhimikatov

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2024