Folic acid and its role in female reproduction


Cite item

Full Text

Abstract

Adequate folate status is a necessary condition for a normal pregnancy, the development of the fetus and child. Recent clinical studies have enhanced the classic recommendations for folic acid intake for the prevention of obstetric complications and fetal malformations. Subsidy of folic acid in the stage of pregravidal preparation and during pregnancy is an important factor in the prevention of miscarriage, premature birth, dysfunction of the fetoplacental complex, fetal malformations and birth weight of infants or immature children. The optimal dose of folate required to compensate for their lack (in addition to folate derived from food), ranges from 400 to 800 micrograms. The use of folic acid in combination with other vitamins and minerals needed during pregnancy has a better effect compared with monotherapy with folic acid. At the moment, there are drugs with structure that, instead of folic acid includes L-methylfolate. In Europe, a comparative, placebo-controlled study, which compared the effects of the use of L-methylfolate ([6S] -5-methyltetrahydrofolate) and folic acid in folate concentration in plasma and erythrocytes was recently held. These studies suggest that folic acid and methylfolate increase the concentration of folate in the blood at the same level, so it makes no sense to use methylfolate instead of folic acid, which has a broad evidence base.

Full Text

Осложнения беременности и преждевременное ее прерывание остаются одной из актуальных проблем современной медицины [1]. Частота преэклампсии составляет около 7% среди беременных женщин, и на ее долю приходится до 70% мертворождений, а риск перинатальных потерь возрастает в 5 раз [2]. Самопроизвольным выкидышем в I триместре заканчивается 16% беременностей, при этом 1-2% всех потерь приходится на привычный выкидыш. Показатель частоты преждевременных родов колеблется от 4 до 12%. Недоношенность и/или задержка внутриутробного развития плода, обусловленная нарушением функции фетоплацентарного комплекса, повышает риск младенческой смертности и как соматическую, так и инфекционную заболеваемость детей. Не менее важной причиной детской заболеваемости и смертности являются пороки развития, которые наблюдаются у 3-5% новорожденных и обусловливают, по данным Всемирной организации здравоохранения, 20% заболеваемости и инвалидности, 15-20% смертности [3, 4]. Первое место по распространенности занимают пороки развития сердца, второе место принадлежит дефектам нервной трубки (ДНТ): ежегодно в мире рождаются 300 тыс. или более новорожденных с расщелиной позвоночника (spina bifida) и анэнцефалией. Пороки развития новорожденных становятся не только трагедией семьи, но и значительной социальной проблемой, существенно обременяющей государство [5]. Снижение материнской и младенческой заболеваемости и смертности является одной из приоритетных медицинских и социальных задач, а главный путь ее решения - профилактика осложнений беременности и пороков развития плода. Многочисленные исследования причин указанных нарушений позволили на сегодняшний день предположить значимую роль в их формировании нутриентного статуса и обозначить обеспечение организма матери всеми необходимыми витаминами, витаминоподобными веществами и микроэлементами как важнейший фактор, способствующий физиологическому течению беременности и нормальному развитию плода [6, 7]. Наибольшее внимание последние годы заслуженно уделяется фолатному статусу. Фолаты Фолаты - производные фолиевой кислоты (ФК) [8] - были изолированы из листьев шпината, за что и получили свое название, происходящее от латинского folia - «лист». Химическая формула ФК включает в себя птеридин, парааминобензойную кислоту и глутамат. Редуцированная или оксидизированная форма ФК тетрагидрофолат (ТГФ) в своем гидратированном варианте может прикреплять в положениях 5 и/или 10 метильные, метиниловые, форминовые и формининовые группы, образуя метаболиты с разной степенью активности и разным предназначением [9]. Поступающая с пищей ФК практически полностью всасывается в тонком кишечнике и метаболизируется в печени до ТГФ. В крови 80% фолатов представлено метилтетрагидрофолатом (МТГФ), транспорт осуществляется альбумином, трансферрином и специфическим фолатсвязывающим протеином. Энтерогепатическая циркуляция играет важную роль в краткосрочной регуляции гомеостаза фолатов, поддерживая их уровень между приемами пищи. В печени и периферических тканях ФК запасается в виде неметилированных полиглутаматов. Этот ресурс позволяет обеспечивать долговременное поддержание уровня фолатов в крови. Экскреция фолатов происходит в основном через почки с весьма эффективной реабсорбцией в случаях острой необходимости. Таким способом организм защищает себя от дефицита фолатов. ФК действительно крайне необходима организму для осуществления жизненно важных функций, а именно репликации, репарации и эпигенетической регуляции (метилирования) ДНК [10], что особенно значимо для клеток тканей, находящихся в процессе активного деления и дифференцировки. Фолаты играют важную роль в процессе кроветворения, а во время беременности принимают участие в формировании ткани плаценты и новых кровеносных сосудов в матке, в связи с чем потребность фолатов у беременных женщин возрастает на 50%. Фолаты участвуют в обмене пуринов, гомоцистеина, холина, гистидина, осуществляют синтез аминокислот, нуклеиновых кислот, пиримидинов, эссенциальных фосфолипидов, нейротрансмиттеров (серотонин, мелатонин, адреналин, дофамин), а также клеточных рецепторов. Как кофермент, ТГФ переносит гидроксиметильные, формильные группы и углеводородные радикалы, участвуя в обмене гомоцистеина, гистидина, триптофана и серина, синтезе пуриновых и пиримидиновых оснований, биосинтезе ДНК [11, 12]. Это обстоятельство используется в фармакологии: цитостатики, подобные метотрексату, ингибируют дигидрофолатредуктазу (ДГФР), которая регенерирует дигидратированный фолат в ТГФ. Так блокируется синтез нуклеиновых кислот и тормозится рост опухоли. Генетически обусловленная недостаточность ДГФР повышает онкологический риск, нарушая клеточный рост и репродукцию [13]. При реметилировании гомоцистеина в метионин ТГФ восстанавливается из метильной формы. Поскольку в эту реакцию включен витамин В12, его дефицит непосредственно сказывается на метаболизме фолатов: извлечение ТГФ из МТГФ становится невозможным, и при повышенном уровне МТГФ возникает функциональный дефицит фолатов с накоплением гомоцистеина. Другой важной причиной фолатной недостаточности с исходом в гипергомоцистеинемию является низкая активность ключевого фермента фолатного обмена метилентетрагидрофолатредуктазы (МТГФР), осуществляющей конверсию 5`10`-метилентетрагидрофолатов в 5-МТГФ - поставщика метильных групп в обмене гомоцистеин/метионин. При полиморфизме генов MTHFR активность МТГФР снижается, уменьшается образование 5-МТГФ и одновременно повышается уровень гомоцистеина в крови, поскольку метильной группы 5-МТГФ не хватает для достаточного метилирования гомоцистеина в метионин. Степень снижения активности варьирует в зависимости от генотипа. Так, полиморфизм MTHFR677ТТ (гомозиготный генотип) редуцирует активность МТГФР на 70%, что приводит к гипергомоцистеинемии. Как показали популяционные исследования, гомозиготный тип встречается примерно в 10-12%, гетерозиготный (СТ) - в 40%, а так называемый дикий тип (СС) - в 50% наблюдений. Учитывая способность организма запасать фолаты и включать при необходимости механизм почечной реабсорбции, трудно ожидать частого формирования значимого дефицита фолатов даже у генетически предрасположенных лиц. Но при сочетанном действии генетических (это относится преимущественно к гомозиготным генотипам) и средовых факторов возможны разные последствия, которые можно объединить в три группы: · онкологический риск, обусловленный недостаточностью ДГФР и других энзимов фолатного цикла [14]; · гипергомоцистеинемия, связанная с недостаточностью МТГФР [15]; · дефицит фолатов, зависимый от недостаточного их поступления в организм. Эта третья группа нарушений наиболее часто встречается в клинической практике и наиболее актуальна для беременных женщин, имеющих повышенную потребность в фолатах, но не всегда обеспечиваемую ввиду гастроинтестинальных нарушений (редко) или алиментарного дефицита (обычно). При наличии полиморфизма MTHFR недостаточное потребление ФК во время беременности несет в себе риск гипергомоцистеинемии и ее осложнений даже у гетерозигот. Однако и у генетически здоровой женщины при малом поступлении ФК депо фолатов может не хватить на растущие нужды плода, и это отразится не только на течении беременности, но и напрямую подействует на плод. Организм женщины в период беременности - единственный источник всех нутриентов для плода, поэтому рациональное питание женщины определяет не только ее собственное здоровье, но и здоровье будущего ребенка. Причем о здоровье надо заботиться заблаговременно, пользуясь способностью организма запасать фолаты, создавая их стратегический резерв в печени и периферических тканях. Вот только возможно ли осуществить достаточное поступление фолатов с помощью рационализации питания? Источники Источники фолатов - листовые овощи, зеленый горошек, цитрусовые, хлеб и крупы, печень животных, пищевые дрожжи, сыр, творог. Но фолаты из пищевых продуктов имеют низкую биодоступность и слабую стабильность в обычных условиях приготовления пищи, опирающихся на термическую обработку, которая ведет к разрушению 90% ФК. Дефицит фолатов усугубляется употреблением гормональных контрацептивов [16], гепатотоксичных антибиотиков и алкоголя. Типичная «западная диета» (высокое содержание мяса, бобовые и картофель, низкое содержание фруктов) связана с пониженными уровнями фолатов, витамина В6, витамина В12 и повышенным уровнем гомоцистеина в плазме крови. По данным крупных исследований, включающих десятки тысяч человек, большинство взрослых людей потребляют меньше фолатов, чем это установлено нормами. Катастрофически выглядит картина фолатного статуса у детей. Недавнее обсервационное исследование, проведенное среди детей и подростков нескольких стран Европы и Америки с целью определения нутриентного статуса, выявило уровень фолата в плазме крови ниже рекомендуемого у 96,3% [17]. Столь же печален был результат определения уровня витамина D, сниженного у 100% обследованных, а также тиамина, дефицит которого был обнаружен у 70% детей и обратно зависел от количества потребляемых фруктов. Дефицит Клинические проявления дефицита ФК далеко не всегда очевидны, но от этого не менее опасны. При недостатке фолатов замедляется рост клеток, поэтому у взрослого организма дефицит ФК наносит наибольший ущерб быстро обновляющимся клеточным популяциям, в первую очередь тканям костного мозга [18]. Классическое следствие глубокого гиповитаминоза B9 - мегалобластная анемия, по тем же причинам дефицит ФК приводит к снижению сопротивляемости болезням из-за недостаточного развития лейкоцитарного ростка и регенерации иммунной системы [19]. Мегалобластная анемия встречается нечасто, но дефицит ФК, наравне с недостатком витаминов В12, В6 и С, может стать причиной железодефицитной анемии вследствие снижения усвоения железа. При менее значительном снижении концентрации фолатов, не манифестирующем себя анемией, могут появляться симптомы психических нарушений: умеренная депрессия, раздражительность, расстройства сна и интеллектуального функционирования. Экспериментальные исследования установили, что антидепрессивный эффект ФК объясняется ее взаимодействием с норадренегическими (a1 и a2) и серотонинергическими рецепторами (5-hydroxytryptamine 5-HT1A и 5-HT2A/2C). Признаками дефицита ФК также являются субклинические нарушения углеводного и жирового обмена, усталость и дезадаптация - неспособность переносить физические и умственные нагрузки. Гипергомоцистеинемия - результат недостаточной активности МТГФР у лиц с полиморфизмом MTHFR (обычно у 677ТТ) - значима в патогенезе атеросклероза, ишемической болезни сердца, инсульта, венозного тромбоза, нейродегенеративных заболеваний, остеопоротических переломов. При повышении уровня гомоцистеина угнетается синтез тромбомодулина, снижается активность антитромбина III и гепарина, усиливается агрегация тромбоцитов. Эндотелиальная дисфункция, возникающая в результате избытка гомоцистеина, включается в патогенез осложнений беременности, зависимых от микроциркуляции, от самопроизвольного выкидыша в I триместре беременности до преэклампсии, преждевременной отслойки плаценты и антенатальной гибели плода [20, 21]. В последние годы получены многочисленные доказательства, что среди женщин с осложненной беременностью значительно чаще встречаются гомозиготные и гетерозиготные генотипы MTHFR. Носители генотипов MTHFR677ТТ и 1298АС имеют повышенный риск самопроизвольного аборта: относительный риск (ОР) для 677ТТ по сравнению с СС/ТТ - 5,0, 95% доверительный интервал (ДИ) 1,2-20,9; ОР для 1298АС по сравнению с АА - 5,5, 95% ДИ 1,1-26,6 [22]. Обсуждается связь полиморфизма генов MTHFR с риском преждевременных родов. Нарушение фолатного обмена отражается и на здоровье детей: полиморфизм гена MTHFR у матери в 2 раза повышает риск аутизма [23]. Интерес к полиморфизму MTHFR понятен, но он не должен оставлять без внимания последствия полиморфизма гена не менее важного участника фолатного цикла - ДГФР. У матерей, гомозиготных по DHFR19bpdel, повышается риск развития у ребенка односторонней ретинобластомы (отношение шансов - ОШ 3,78; 95% ДИ 1,89-7,55) [24]. Избыточное потребление ФК, превышающее суточную потребность, в таких ситуациях увеличивает онкологический риск вне зависимости от генотипа ребенка. Среди всех негативных последствий дефицита и нарушений обмена фолатов особого внимания заслуживают врожденные пороки развития плода: ДНТ (анэнцефалия, мозговая грыжа, spina bifida) в первую очередь [25], но также аномалии мочеполового тракта, врожденные пороки сердца, челюстно-лицевой области («волчья пасть»), конечностей и др. [26]. Например, низкое потребление ФК с пищей соответствует 4-кратному увеличению риска дефектов конечностей (ОШ 3,9, 95% ДИ 1,08-13,78). Роль разных вариантов нарушений фолатного цикла в генезе пороков развития до конца неясна, по-видимому, дефицит ФК здесь более значим, чем недостаточность МТГФР. Обсуждается вероятный токсический эффект гомоцистеина на плод [27], но в экспериментальных исследованиях инъекции гомоцистеина беременным мышам или введение его в культуру крысиных эмбрионов не оказывало токсического или тератогенного действия, в том числе не вызывало ДНТ [28]. Более того, в поисках причин известного тератогенного эффекта вальпроевой кислоты группа исследователей обнаружила, что вальпроат повышает экспрессию МТГФР [29] и в эксперименте на линии мышей с низкой активностью фермента увеличивает частоту ДНТ. Вероятно, высокая экспрессия МТГФР, нарушающая баланс метилированных и неметилированных фолатов, также вредна, как и недостаточная активность. Объяснить этот феномен можно, вспомнив о множественных эффектах эндогенных фолатов. Неметилированные фолаты используются для синтеза тимидина и пурина, а МТГФР конвертирует их в 5-МТГФ, используемый для метиляции гомоцистеина в метионин [30]. Избыточная активность МТГФР нарушает баланс метилированных и неметилированных фолатов, что наносит ущерб синтезу тимидина и пурина и не позволяет обеспечить адекватный уровень нуклеотидов для синтеза ДНК. Низкая активность фермента препятствует восстановлению ТГФ из 5-МТГФ вследствие его недостатка и так же создает дефицит неметилированных фолатов для участия в синтезе ДНК. Учитывая сложность взаимосвязей в пределах фолатного цикла, однозначной трактовки обмена фолатов и их влияния на биохимические процессы в организме следует избегать. На сегодняшний день бесспорным можно считать тот факт, что недостаточное поступление ФК, субстрата для синтеза эндогенных фолатов, приводит к нарушению синтеза ДНК и формирует пороки развития вне зависимости от полиморфизма MTHFR. Роль гипергомоцистеинемии в появлении ДНТ дискутабельна, а любое существенное изменение активности МТГФР и смещение соотношения метилированных и неметилированных фолатов могут повлечь за собой нарушение синтеза ДНК даже при нормальном поступлении ФК с пищей. Фолатный статус Исходя из значения фолатов для нормального течения беременности и развития плода и роли фолатного дефицита в формировании материнской и детской заболеваемости и смертности, создание оптимального фолатного статуса следует считать стратегически важной задачей акушерства и гинекологии. Наилучшим способом решения этой задачи является создание депо фолатов на этапе прегравидарной подготовки и продолжения дотации витамина во время беременности [31]. Дотация ФК в виде лекарственных препаратов уменьшает риск ДНТ, что было многократно доказано в клинических исследованиях [34], и снижает частоту других аномалий развития и врожденных мальформаций [35]. В странах Северной Европы и Скандинавии увеличение потребления женщинами синтетической ФК на этапе прегравидарной подготовки от 0,4 до 51% привело к снижению частоты ДНТ на 16% [36]. По данным Итальянского национального института здоровья, прием ФК до и во время беременности в количестве 400 мкг/сут предотвращает аномалии эмбриогенеза мозга, сердца, мочевыделительной системы, образование расщелины верхнего неба, дефектов конечностей, дефектов больших артерий и омфалоцеле - пупочной грыжи [37]. Применение ФК снижает риск синдрома Дауна [38, 39], врожденных пороков сердца, челюстно-лицевых дефектов [40]. В эксперименте ФК предотвращала врожденные пороки развития у мышей с моделью сахарного диабета [41]. В ряде исследований показано, что дополнительный прием ФК благоприятно влияет на течение беременности в целом и весо-ростовые показатели плода [42]. Дозирование Принципиально важным фактором эффективности и безопасности приема ФК является ее дозирование. Суточная потребность ФК определена для разных категорий населения, известны пороговые значения фолата в плазме крови, выход за которые нежелателен. Согласно нормам, установленным немецким обществом по вопросам питания, оптимальное потребление фолатов для беременных женщин составляет 600-800 мкг эквивалентов фолатов в сутки. При этом подчеркивается необходимость дополнительного приема ФК, не считая фолатов, получаемых с продуктами питания, ориентировочно 400 мкг/сут для всех беременных. Данные рекомендации действуют на протяжении многих лет и согласуются с мнением других европейских и американских специалистов. Недавний совместный анализ результатов дотации ФК, проведенный немецкими, швейцарскими и австрийскими специалистами, подтвердил это положение [43]. Сравнительный анализ исследований по использованию фолатов для профилактики ДНТ показывает, что применение высоких доз ФК (от 1000 до 5000 мкг/сут) имеет такой же результат, как и прием 400-800 мкг/сут, т.е. снижение риска ДНТ на 50-80% [44]. Избыток ФК (прием более 1000 мкг/сут), особенно при генетически обусловленной недостаточной активности ферментов фолатного цикла, может иметь негативные последствия, блокируя действие и создавая дисбаланс разных форм фолатов, нарушая стабильность ДНК и приводя к нежелательным исходам, так же, как и фолатный дефицит [31]. Отслеживание здоровья потомства показало, что дети матерей, имевших повышенный уровень фолатов вследствие приема высоких доз ФК, входят в группу риска по развитию ожирения [45]. Стоит помнить и о редких, но опасных осложнениях избыточного потребления фолатов при наличии полиморфизма DHFR [13]. Таким образом, эффективной и безопасной профилактической суточной дозой ФК является доза в пределах 400-1000 мкг. Формы В настоящее время фолаты активно применяются как монопрепараты, в составе витаминных комплексов и даже оральных контрацептивов [46]. При этом используются два вида витамина: синтетическая ФК и L-метилфолат. Синтетическая ФК (в аннотациях обозначается как ФК) - проверенный способ дотации фолатов. Попадая в организм, ФК подвергается серии ферментных реакций, в результате которых образуются как депо-формы, так и активные формы. Прием синтетической ФК имеет прямую корреляцию с повышением уровня фолатов в плазме крови и эритроцитах и обратную - с уровнем гомоцистеина [47]. Все основные исследования эффективности и безопасности были проведены именно на синтетической ФК, токсические эффекты ФК не описаны. В конце 1990-х годов была запатентована еще одна форма витамина B9. Это левомефолат (левовращающий изомер, L-метилфолат) кальция. Стабильное кальциевое соединение 5-МТГФ (кальций L-метилфолат) позволяет обеспечить достаточное присутствие фолатов в тканях независимо от полиморфизма генов, кодирующих активность МТГФР. Но представления об эффективности и безопасности левомефолата опираются только на данные по ФК, что методически некорректно. До получения дополнительных сведений применение левомефолата в составе витаминных комплексов и контрацептивов более обосновано у женщин с подтвержденной недостаточностью МТГФР. На сегодняшний день европейские эксперты рекомендуют прием именно ФК на этапе прегравидарной подготовки и во время беременности [43], а Food and Drug Administration напоминает, что левомефолат (метилфолат) кальция и ФК не являются эквивалентными веществами, и обязывает производителей указывать, какой фолат содержат биодобавка или лекарственный препарат. В Европе было проведено рандомизированное двойное слепое плацебо-контролируемое клиническое исследование, в котором сравнили влияние применения метилфолата ([6S]-5-МТГФ) и ФК на концентрацию фолатов в плазме и эритроцитах в течение 24 нед у женщин детородного возраста (18-49 лет) [68]. Женщины (n=104) были отобраны и случайным образом разделены на группы, в которых получали: группа №1 - ФК 100 мг в день (n=31); 1. группа №2 - метилфолат (МТГФ) в дозировке 113 мг в день (n=38); 2. группа №3 - плацебо (n=28)(см. таблицу). Данные исследования свидетельствуют о том, что метилфолат (МТГФ) и ФК увеличивают концентрацию фолатов в крови на аналогичном уровне. ФК при применении до и во время беременности доказанно снижает риск развития ДНТ. Данные о том, снижает ли МТГФ (метилфолат) риск развития ДНТ, отсутствуют. Метаболизм фолатов и процессы метилирования ДНК, столь важные для роста клеток, в равной степени нарушаются при дефиците каждого из витаминов В6, В9 или В12. В связи с этим так же, как и ФК, уровень других витаминов группы В перед зачатием исключительно важен для генетического здоровья, а во время беременности - для профилактики дисморфизма нервной системы плода. Недостаток витамина В12 у беременных негативно сказывается на метаболизме фолатов и увеличивает риск развития врожденных дефектов плода - прежде всего ДНТ [50-52], но также и пороков сердечно-сосудистой системы [53]. В эксперименте низкое содержание в диете рибофлавина ассоциировано с пороками развития сердца [54]. Женщины, уровень витамина В6 в крови которых находится в верхней половине диапазона нормы, имеют более высокие шансы забеременеть (ОШ 1,4; 95% ДИ 1,1-1,9) и меньше шансов потерять беременность (ОШ 0,7; 95% ДИ 0,4-1,1) по сравнению с женщинами с низкой концентрацией витамина В6 [55]. Однако и полный комплекс витаминов группы В не решает проблему пороков развития. Исследование, проведенное в Дании, продемонстрировало, что низкое потребление растительных протеинов, железа, магния и ниацина перед зачатием ассоциировано с 2-5-кратным повышением риска spina bifida [56]. Риск формирования расщелин верхнего неба и губы возрастает в 2 раза при низком потреблении рибофлавина, магния, кальция, витамина В12 и цинка [57]. Возникновение пороков сердца ассоциировано с низким потреблением рибофлавина и никотинамида при высоком содержании насыщенных жиров в пище [58]. Значительную роль в развитии сердца и сосудов играет ретиноевая кислота, и ее дефицит, как и избыток, негативно отражается на кардиоваскулярной системе [59]. В эксперименте гиповитаминоз А ассоциировался с мальформацией гортани [60]. Поливитаминные комплексы Применение женщинами поливитаминных комплексов в комбинации с микроэлементами эффективнее снижает риск рождения детей с пороками развития, чем монопрепараты ФК. Например, в одном из многочисленных исследований комплекс витаминов группы В (ФК, витамины В1, В6, В9 и В12), минералы (кальций, железо, магний и цинк) и витамин Е редуцировали риск врожденной диафрагмальной грыжи [61]. Использование антиоксидантов - витаминов С и Е - снижало частоту ДНТ у детей женщин, больных сахарным диабетом [62]. Прием витаминно-минеральных комплексов беременными женщинами полностью нивелировал риск тетрады Фалло и диспозиции крупных сосудов у детей в исследовании случай-контроль [63]. При использовании поливитаминных комплексов в большей степени, чем при приеме только ФК, снижается риск не только пороков развития плода, но и осложнений беременности. Это неудивительно, поскольку роль ряда витаминов, особенно комплекса В и антиоксидантов (аскорбиновая кислота и токоферол), в профилактике преэклампсии давно известна [64]. Если дотация ФК в сравнительном исследовании течения 280 197 одноплодных беременностей уменьшало риск преждевременной отслойки нормально расположенной плаценты на 19%, то применение комплекса витаминов с ФК - на 28% [65]. Таким образом, применение комплексных средств, содержащих необходимые для нормального течения беременности витамины и микроэлементы, является оптимальным решением задачи сохранения здоровья матерей и рождения здоровых детей. Одним из качественных витаминно-минеральных комплексов, содержащих все необходимые витамины и микроэлементы, является лекарственный препарат Витрум Пренатал Форте, эффективность и безопасность которого доказана в многоцентровых клинических исследованиях*. Помимо ФК, в препарате присутствуют достаточные количества витаминов группы В, витамина С, Е, йода и других витаминов и микроэлементов. Сбалансированный состав (13 витаминов и 10 минералов) Витрум Пренатал Форте полностью соответствует физиологической потребности беременных женщин. Учитывая огромную доказательную базу пользы витаминов, клиницист не должен ставить вопрос о том, назначать или не назначать женщине, планирующей и вынашивающей беременность, хорошо изученные лекарственные препараты. Это является нормой ведения пациентов во многих странах мира, в том числе обладающих наиболее развитой медицинской помощью, таких как Германия, Франция, Швейцария и др. В России подобный подход тем более оправдан. Исследования лаборатории обмена витаминов и минеральных веществ Института питания РАМН свидетельствуют о широком распространении дефицита витаминов среди беременных женщин во всех регионах нашей страны. Дефицит витаминов группы В выявляется у 20-100% обследованных, аскорбиновой кислоты - 13-50%, каротиноидов - 25-94%. Наиболее часто отмечается дефицит железа, йода, кальция, цинка, хрома, ФК, биотина, витаминов А, D, В1, В6 [66, 67]. Следует обратить внимание на то, что использование биологически активных добавок (БАД) у беременных не оправдано, так как БАДы проходят исследования только на безопасность, данные об их эффективности полностью отсутствуют. Учитывая высокую распространенность гиповитаминозов и гипоэлементозов и их роль в формировании осложнений беременности и пороков развития плода, необходимо предусматривать назначение лекарственных витаминно-минеральных комплексов на этапе прегравидарной подготовки и в течение беременности всем женщинам. Лекарственные комплексы, сбалансированные по составу и проверенные в клинических испытаниях (Витрум Пренатал Форте), являются оптимальным вариантом выбора для назначения беременным женщинам. *В 2005 г. Исследование эффективности препарата Витрум® Пренатал Форте при угрозе преждевременных родов. ГУ ЦПСиР, г. Москва. Р.И.Ша- лина. В 2007 г. Изменение показателей иммунитета у беременных из группы риска по развитию гестационных осложнений на фоне приема препа- рата Витрум® Пренатал Форте. ГУ НИИ клинической иммунологии СО РАМН, г. Новосибирск. Н.М.Пасман. В 2007-2008 гг. Открытое сравнительное клиническое исследование эффективности, безопасности применения препарата Витрум® Пренатал Форте у беременных женщин с цитомегаловирусной инфекцией. Центр перинатальных инфекций МГМСУ. В.Н.Кузьмин.
×

About the authors

I V Kuznetsova

Email: ms_smith@list.ru

V A Konovalov

References

  1. Беременность и роды. Кохрановское руководство, 2010. Под ред. Г.Т.Сухих. М.: Логосфера.
  2. Генетический паспорт - основа индивидуальной и предиктивной медицины. Под ред. В.С.Баранова. Спб.: Изд - во Н-Л, 2009.
  3. Яковлева Т.В. Причины и динамика перинатальной смертности в Российской Федерации. Здравоохранение Российской Федерации. 2005; 4: 26-8.
  4. Howard J.A. Recurrent pregnancy loss: causes, controversies and treatment. Informa UK Ltd 2007.
  5. Yi Y, Lindemann M, Colligs A, Snowball C. Economic burden of NTDs. Eur J Pediatr 2011; 170: 1391-400.
  6. Geissler C, Powers H. (eds) Human Nutrition. Elsevier Churchill Livingstone, Netherlands, 2005.
  7. Torshin I.Y, Gromova O.A. Magnesium and pyridoxine: fundamental studies and clinical practice. Nova Sci 2009; ISBN-10: 1-60741-704-9.
  8. Hans Konrad Biesalski. Pocket Atlas of Nutrition. Thieme 2006.
  9. Nijhout H.F, Reed M.C, Budu P, Ulrich C.M. A mathematical model of the folate cycle: new insights into folate homeostasis. J Biol Chem 2004; 279 (53): 55008-16.
  10. Альбертс Б., Брэй В. и др. Молекулярная биология клетки. Изд. 5-е. М., 2008.
  11. Finkelstein J.D. Metabolic regulatory properties of S-adenosylmethionine and S-adenosylhomocysteine. Clin Chem Lab Med 2007; 45: 1694-9.
  12. Lennard L. Methyltransferases. In: Guengerich F.P (ed) Biotransformation. Comprehensive toxicology. Elsevier, Oxford, UK 2010; 4 (21).
  13. Howe H.L, Wu X, Ries L.A et al. Annual report to the nation on the status of cancer, 1975-2003, featuring cancer among US Hispanic/Latino populations. Cancer 2006; 107: 1711-42.
  14. Wu X, Zou T, Cao N et al. Plasma homocysteine levels and genetic polymorphisms in folate metablism are associated with breast cancer risk in chinese women. Hered Cancer Clin Pract 2014; 12 (1): 2.
  15. Родионов Р.Н., Лентц С.Р. Современные представления о гипергомоцистеинемии как факторе риска сердечно - сосудистых заболеваний. Артериальная гипертензия. 2008; 14 (1): 110-5.
  16. Berenson A.B, Rahman M. Effect of hormonal contraceptives on vitamin B12 level and the association of the latter with bone mineral density. Contraception 2012; 86 (5): 481-7.
  17. Monteiro J.P, Wise C, Morine M.J et al. Methylation potential associated with diet, genotype, protein, and metabolite levels in the Delta Obesity Vitamin Study. Genes Nutr 2014; 9: 403-22.
  18. Baumgartner M.R. Vitamin - responsive disorders: cobalamin, folate, biotin, vitamins B1 and E. Handb Clin Neurol 2013; 113: 1799-810.
  19. Abe I, Shirato Y, Hashizume Y et al. Folate - deficiency induced cell - specific changes in the distribution of lymphocytes and granulocytes in rats. Environ Health Prev Med 2013; 18: 78-84.
  20. Mujawar S.A, Patil V.W, Daver R.G. Study of serum homocysteine, folic acid and vitamin B12 in patients with preeclampsia. Indian J Clin Biochem 2011; 26 (3): 257-60.
  21. Emonts P, Seaksan S, Seidel L et al. Prediction of maternal predisposition to preeclampsia. Hypertens Pregnancy 2008; 27 (3): 237-45.
  22. Rodriguez-Guillen M.R, Torres-Sánchez L, Chen J et al. Dietary consumption of B vitamins, maternal MTHFR polymorphisms and risk for spontaneous abortion. Salud Publica Mex 2009; 51 (1): 19-25.
  23. Schmidt R.J, Tancredi D.J, Ozonoff S et al. Maternal periconceptional folic acid intake and risk of autism spectrum disorders and developmental delay in the CHARGE (Childhood Autism Risks from Genetics and Environment) case - control study. Am J Clin Nutr 2012; 96 (1): 80-9.
  24. Orjuela M.A, Cabrera-Muñoz L, Paul L et al. Risk of retinoblastoma is associated with a maternal polymorphism in dihydrofolatereductase (DHFR) and prenatal folic acid intake. Cancer 2012; 118 (23): 5912-9.
  25. Candito M, Rivet R, Herbeth B. Nutritional and genetic determinants of vitamin B and homocysteine metabolisms in neural tube defects: a multicenter case - control study. Am J Med Genet A 2008; 146 A (9): 1128-33.
  26. Molloy A.M, Kirke P.N, Brody L.C et al. Effects of folate and vitamin B12 deficiencies during pregnancy on fetal, infant, and child development. Food Nutr Bull 2008; 29 (Suppl. 2): S101-11.
  27. Rozen R. Methylenetetrahydrofolate reductase gene polymorphism - clinical implications. Encyclopedia of Medical Genomics and Proteomics 2005; 10.1081/E-EDGP-120030861
  28. Bennett G.D, Vanwaes J, Moser K et al. Failure of homocysteine to induce neural tube defects in a mouse model. Birth Defects Res B Dev Reprod Toxicol 2006; 77: 89-94.
  29. Roy M, Leclerc D, Wu Q et al. Valproic acid increases expression of methylenetetrahydrofolate reductase (MTHFR) and induces lower teratogenicity in MTHFR deficiency. J Cell Biochem 2008; 105 (2): 467-76.
  30. Celtikci B, Leclerc D, Lawrance A.K et al. Altered expression of methylenetetrahydrofolate reductase modifies response to methotrexate in mice. Pharmacogen Genom 2008; 18 (7): 577-89.
  31. Mosley B.S, Cleves M.A, Siega-Riz A.M et al. Neural tube defects and maternal folate intake among pregnancies conceived after folic acid fortification in the United States. Am J Epidemiol 2009; 169: 9-17.
  32. Spina bifida and anencephaly before and after folic acid mandate - United States, 1995-1996 and 1999-2000. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2004; 53: 362-5.
  33. Busby A, Abramsky L, Dolk H et al. Preventing neural tube defects in Europe: population based study. BMJ 2005; 330: 574-5.
  34. Smith A.D, Kim Y.I, Refsum H. Is folic acid good for everyone? Am J Clin Nutr 2008; 87 (3): 517-33.
  35. Salerno P, Bianchi F, Pierini A, Baldi F. Folic acid and congenital malformation: scientific evidence and public health strategies. Ann Ig 2008; 20 (6): 519-30.
  36. De Walle H.E, de Jong - van den Berg L.T. Ten years after the Dutch public health campaign on folic acid: the continuing challenge. Eur J Clin Pharmacol 2008; 64: 539-43.
  37. Busby A, Abramsky L, Dolk H, Armstrong B. Eurocat Folic Acid Working Group. Preventing neural tube defects in Europe: population based study. Br Med J 2005; 330: 574-5.
  38. Patterson D. Folate metabolism and the risk of Down syndrome. Downs Syndr Res Pract 2008; 12 (2): 93-7.
  39. Czeizel A.E, Puho E. Maternal use of nutritional supplements during the first month of pregnancy and decreased risk of Down's syndrome: case - control study. Nutrition 2005; 21 (6): 698-704.
  40. Bailey L.B, Berry R.J. Folic acid supplementation and the occurrence of congenital heart defects, orofacial clefts, multiple births, and miscarriage. Am J Clin Nutr 2005; 81 (5): 1213S-17S.
  41. Oyama K. Folic acid prevents congenital malformations in the offspring of diabetic mice. Endocr J 2009; 56 (1): 29-37.
  42. Громова О.А., Торшин И.Ю., Тетруашвили Н.К., Сидельникова В.М. Нутрициальный подход к профилактике избыточной массы тела новорожденных. Гинекология. 2010; 12 (5): 56-61.
  43. Krawinkel M.B, Strohm D, Weissenborn A et al. Revised D-A-CH intake recommendations for folate: how much is needed? Eur J Clin Nutr 2014; 68 (6): 719-23.
  44. Громова О.А., Торшин И.Ю. Применение фолиевой кислоты в акушерстве и гинекологии. 2009. М.: РСЦ ЮНЕСКО.
  45. Yanic C.S, Deshpande S.S, Jackson A.A. Vitamin B12 and folate concentrations during pregnancy and insulin resisstance in the offspring: the Pune Maternal Nutrition Study. Diabetologia 2008; 51 (1): 29-38.
  46. Blode H, Klipping C, Richard F et al. Bioequivalence study of an oral contraceptive containing ethinylestradiol/drospirenone/levomefolate calcium relative to Yaz® and to levomefolate calcium alone. Contraception 2012; 85: 177-84.
  47. Yoshino K, Nishide M, Sankai T et al. Validity of brief food frequency questionnaire for estimation of dietary intakes of folate, vitamins B6 and B12, and their associations with plasma homocysteine concentrations. Int J Food Sci Nutr 2010; 61 (1): 61-7.
  48. Scaglione F, Panzavolta G. Folate, folicacid and 5-methyltetrahydrofolate are notthesamething. Xenobiotica 2014; 44 (5): 480-8.
  49. Chen C.P. Syndromes, disorders and maternal risk factors associated with neural tube defects (VI). Taiwan J Obstet Gynecol 2008; 47 (3): 267-75.
  50. Black M.M. Effects of vitamin B12 and folate deficiency on brain development in children. Food Nutr Bull 2008; 29 (Suppl. 2): S126-31.
  51. Molloy A.M, Kirke P.N, Troendle J.F. Maternal vitamin B12 status and risk of neural tube defects in a population with high neural tube defect prevalence and no folic Acid fortification. Pediatrics 2009; 123 (3): 917-23.
  52. Zhang T, Xin R, Gu X, Wang F. Maternal serum vitamin B12, folate and homocysteine and the risk of neural tube defects in the offspring in a high - risk area of China. Public Health Nutr 2009; 12 (5): 680-6.
  53. Verkleij-Hagoort A.C, de Vries J.H, Ursem N.T et al. Dietary intake of B-vitamins in mothers born a child with a congenital heart defect. Eur J Nutr 2006; 45 (8): 478-86.
  54. Chan J, Deng L, Mikael L.G. Low dietary choline and low dietary riboflavin during pregnancy influence reproductive outcomes and heart development in mice. Am J Clin Nutr 2010; 91 (4): 1035-43.
  55. Ronnenberg A.G, Venners S.A, Xu X et al. Preconception B-vitamin and homocysteine status, conception, and early pregnancy loss. Am J Epidemiol 2007; 166 (3): 304-12.
  56. Groenen P.M, van Rooij I.A, Peer P.G. Low maternal dietary intakes of iron, magnesium, and niacin are associated with spina bifida in the offspring. J Nutr 2004; 134 (6): 1516-22.
  57. Wallenstein M.B, Shaw G.M, Yang W, Carmichael S.L. Periconceptional nutrient intakes and risks of orofacial clefts in California. Pediatr Res 2013; 74 (4): 457-65.
  58. Smedts H.P, Rakhshandehroo M, Verkleij-Hagoort A.C et al. Maternal intake of fat, riboflavin and nicotinamide and the risk of having offspring with congenital heart defects. Eur J Nutr 2008; 47 (7): 357-65.
  59. Nakajima Y, Imanaka-Yoshida K. New insights into the developmental mechanisms of coronary vessels and epicardium. Int Rev Cell Mol Biol 2013; 303: 263-317.
  60. Tateya I, Tateya T, Surles R.L et al. Prenatal vitamin A deficiency causes laryngeal malformation in rats. Ann Otol Rhinol Laryngol 2007; 116 (10): 785-92.
  61. Yang W, Shaw G.M. Nutrient intakes in women and congenital diaphragmatic hernia in their offspring. Birth Defects Res A Clin Mol Teratol 2008; 82 (3): 131-8.
  62. Dheen S.T, Tay S.S. Recent studies on neural tube defects in embryos of diabetic pregnancy: an overview. Curr Med Chem 2009; 16 (18): 2345-54.
  63. Shaw G.M, Carmichael S.L, Yang W, Lammer E.J. Periconceptional nutrient intakes and risks of conotruncal heart defects. Birth Defects Res A Clin Mol Teratol 2010; 88 (3): 144-51.
  64. Klemmensen A, Tabor A, Osterdal M.L. Intake of vitamin C and E in pregnancy and risk of pre - eclampsia: prospective study among 57346 women. BJOG 2009; 116 (7): 964-74.
  65. Nilsen R.M, Vollset S.E, Rasmussen S.A. Folic acid and multivitamin supplement use and risk placental abruption: a population - based registered study. Am J Epidemiol 2008; 167 (7): 867-74.
  66. Маталыгина О.А. Питание беременных и кормящих женщин. Решенные и нерешенные проблемы. Вопр. соврем. педиатрии. 2008; 7 (5): 23-9.
  67. Хорошилов И.Е., Успенский Ю.В. Новые подходы в лечебном питании беременных и кормящих женщин. Гинекология. 2008; 4: 67-77.
  68. Bernard J Venn, Timothy J Green, Rudolf Moser et al. Increases in blood folate indices are similar in women of childbearing age supplemented with [6S]-5-methyltetrahydrofolate and folic acid 2002.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2014 Consilium Medicum

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС77-63961 от 18.12.2015.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies