Активность ферментов энергетического и углеводного обмена у радужной форели (Оncorhynchus mykiss Walb.) при введении круглосуточного освещения в условиях аквакультуры Южного региона РФ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

У радужной форели Oncorhynchus mykiss Walb., выращиваемой в условиях аквакультуры на предприятии в Северной Осетии – Алании, исследовали активность ферментов энергетического и углеводного обмена (цитохром c оксидазы, пируваткиназы, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы, 1-глицерофосфатдегидрогеназы, лактатдегидрогеназы, альдолазы) при введении режима, включающего круглосуточное освещение и ночное кормление. Согласно результатам исследования, активность цитохром c оксидазы и пируваткиназы в печени рыб из экспериментальной группы была достоверно выше, чем у контрольных особей, что свидетельствует о повышении уровня аэробного обмена синтеза АТФ. Активность альдолазы в органах рыб, выращиваемых при круглосуточном освещении, была ниже по сравнению с рыбами из контрольной группы, что указывает на снижение уровня использования углеводов в гликолизе в мышцах и интенсивности глюконеогенеза в печени. Выявленные различия позволяют предположить, что при введении круглосуточного освещения и ночного кормления наблюдаются метаболические перестройки в энергетическом и углеводном обмене, способствующие процессам биосинтеза и, соответственно, приросту массы рыб.

Об авторах

М. А. Родин

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”

Email: kuznetsovamvi@yandex.ru
Россия, Петрозаводск

М. В. Кузнецова

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”

Автор, ответственный за переписку.
Email: kuznetsovamvi@yandex.ru
Россия, Петрозаводск

М. Ю. Крупнова

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”

Email: kuznetsovamvi@yandex.ru
Россия, Петрозаводск

А. Е. Курицын

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”

Email: kuznetsovamvi@yandex.ru
Россия, Петрозаводск

Н. Н. Немова

Институт биологии – обособленное подразделение Федерального исследовательского центра “Карельский научный центр РАН”

Email: kuznetsovamvi@yandex.ru

академик РАН

Россия, Петрозаводск

Список литературы

  1. Boeuf G., Falcon J., Photoperiod and growth in fish // Vie Milieu. 2002. Vol. 51. P. 237–246.
  2. Noori A., Mojazi Amiri B., Mirvaghefi A., et al. Enhanced growth and retarded gonadal development of farmed rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) following a long-day photoperiod // Aquac. Res. 2015. Vol. 46. P. 2398–2406.
  3. Lundova K., Matousek J., Prokesova M., et al. The effect of timing of extended photoperiod on growth and maturity of brook trout (Salvelinus fontinalis) // Aquac. Res. 2019. Vol. 50, №6. P. 1697–1704.
  4. Sonmez A.Y., Hisar O., Hisar S.A., et al. The effects of different photoperiod regimes on growth, feed conversion rate and survival of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry // J Anim Vet Adv. 2009. Vol. 8. P. 760–763.
  5. Озернюк Н.Д. Энергетический обмен в раннем онтогенезе рыб // М.: Наука. 1985. 175 с.
  6. Churova M.V., Shulgina N., Kuritsyn A., et al. Muscle-specific gene expression and metabolic enzyme activities in Atlantic salmon Salmo salar L. fry reared under different photoperiod regimes // Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. 2020. Vol. 239. P. 110330.
  7. Smith L. Spectrophotometric assay of cytochrome c oxidase // Methods in Biochem Analysis. 1995. Vol. 2. P. 427–434.
  8. Колб В.Г., Камышников В.С. Клиническая биохимия // Минск: Изд-во Беларусь. 1976. 311 с.
  9. Кочетов Г.А. Практическое руководство по энзимологии // М.: Высш. шк. 1980. 272 с.
  10. Bücher T., Pfleiderer G. Pyruvate kinase from muscle // Methods in Enzymology. 1955. Vol. 1. P. 345–440.
  11. Bradford M.M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248–254.
  12. Gauthier C., Campbell P., Couture P. Physiological correlates of growth and condition in the yellow perch (Perca flavescens) // Comparative Biochemistry and Physiology. Part A. 2008. Vol. 151. P. 526–532.
  13. Metón I., Mediavilla D., Caseras A., et al. Effect of diet composition and ration size on key enzyme activities of glycolysis–gluconeogenesis, the pentose phosphate pathway and amino acid metabolism in liver of gilthead sea bream (Sparus aurata) // British J. Nutrition. 1999. Vol. 82, №3. P. 223–232.
  14. Björnsson B.T., Thorarensen H., Hirano T., et al. Photoperiod and temperature affect plasma growth hormone levels, growth, condition factor and hypoosmoregulatory ability of juvenile Atlantic salmon (Salmo salar) during parr-smolt transformation // Aquaculture. 1989. Vol. 82, №1–4. P. 77–91.
  15. Llewellyn L., Sweeney G.E., Ramsurn V.P., et al. Cloning and unusual expression profile of the aldolase B gene from Atlantic salmon // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Gene Structure and Expression. 1998. Vol. 1443(3). P. 375–380.
  16. Tian W.N., Braunstein L.D., Pang J., et al. Importance of glucose-6-phosphate dehydrogenase activity for cell growth // J. Biol. Chem. 1998. Vol. 273. P. 10609–10617.
  17. Harmon J.S., Sheridan M.A. Glucose-stimulated lipolysis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) liver // J. Fish Physiol. and Biochem. 1992. Vol. 10. P. 189–199.
  18. Treberg J.R., Lewis J.M., Driedzic W.R. Comparison of liver enzymes in osmerid fishes: key differences between a glycerol accumulating species, rainbow smelt (Osmerus mordax), and a species that does not accumulate glycerol, capelin (Mallotus villosus) // Comp. Biochem. Physiol. A Mol. Integr. Physiol. 2002. Vol. 132. P. 433–438.
  19. Biswas A.K., Seoka M., Inoue Y., et al. Photoperiod influences the growth, food intake, feed efficiency and digestibility of red sea bream (Pagrus major) // Aquaculture. 2005. Vol. 250, №3–4. P. 666–673.
  20. Kuznetsova M.V., Rodin M.A., Shulgina N.S., et al. The Influence of Different Lighting and Feeding Regimes on the Activity of Metabolic Enzymes in Farmed Atlantic Salmon Fingerlings // Russian Journal of Developmental Biology. 2023. Т. 54, №2. С. 147–155.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2024